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Hola a tod@s: En esta ocasión presentamos una nueva ficha de Lachnum pygmaeum.
En el siguiente enlace tenemos la magnífica ficha descriptiva de Javi Calvo Pérez, además de las fotografías y su correspondiente microscopía.
www.fungipedia.org/hongos/lachnum-pygmaeum.html
Saludos.
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Hola.
Otra remesa de lo que dio de sí mi estancia en la República Dominicana, entre enero y marzo de este año, todo de especies pertenecientes a géneros que ya había estudiado con anterioridad.
Empezamos con una Hyalorbilia muy común por la zona del Caribe, la Hyalorbilia pueroricensis:
Los apotecios a 20 aumentos:
Las hifas del excípulo de textura rectangular en agua:
Las hifas marginales, globosas con 3 filas características de la especie:
Los ascos en solución de Rojo Congo, con su capa de gel congófila:
Los ascos en agua:
Y por último unas pocas esporas en agua:
Seguimos con una diminuta que no tengo claro ni el género, sobre hojas del suelo en descomposición de Coccoloba uvifera, su aspecto como la microscopía obtenida sugieren una Volutella cf.:
Los conidiomas a 20 aumentos:
Los pelos marginales con incrustaciones a 1000 aumentos:
Las hifas conidiógenas:
Y los conidios:
Estos conidios libres con unas medidas de:
(12.1) 12.3 - 14.2 (15.1) × (2.1) 2.3 - 2.57 (2.6) µm
Q = (4.7) 4.9 - 6.1 (6.6) ; N = 20
Me = 13.4 × 2.4 µm ; Qe = 5.6
Continuamos con uno que me he encontrado en infinidad de ocasiones, creo que no soy yo quien lo encuentra sino que es él el me encuentra a mí, en todos los Continentes, ahora sobre una espata de palmera de coco del suelo en descomposición, tenemos el Clitopilus hobsonii:
Un par de imágenes a 20 aumentos:
Las hifas de la suprapellis en solución de Rojo Congo diluído:
Las mismas en Reactivo de Melzer:
La arista laminar en Rojo Congo, sin elementos diferenciados de los basidios o basidiolos:
La arista laminar en Reactivo de Melzer:
Los basidios de la cara laminar en el mismo medio:
Las esporas en reactivo de Melzer, inamiloides:
Y las esporas en agua:
Estas esporas en agua con unas medidas de:
(7) 7.1 - 8 (8.7) × (3.8) 4.1 - 4.7 (5.1) µm
Q = (1.5) 1.6 - 1.8 (1.9) ; N = 28
Me = 7.5 × 4.4 µm ; Qe = 1.7
Sobre el escobajo de una cáscara de coco. una sin duda Tomentella, a tenor de sus características microscópicas cercana a la Toementella punicea Europea, es decir Tomentella aff. punicea:
Los basidiomas a 20 aumentos:
Las hifas subhimeniales en Reactivo de Melzer:
Las hifas subhimeniales en solución de KOH:
Las hifas subiculares en Reactivo de Melzer:
Las hifas subiculares en solución de KOH:
Los basidios en agua, estos basidios con unas medidas de (34.6) 40.2 - 53.2 (54.5) × (7) 9.2 - 12 (13.4) µm., Me = 45.3 × 10.5 µm.
Los basidios en KOH:
Los basidios en Reactivo de Melzer:
Las esporas en agua:
Las esporas en solución de KOH:
Las esporas en Reactivo de Melzer:
Estas esporas libres en distintos medios, con unas medidas sin contar las espinas de:
(7.3) 8.1 - 9.6 (9.9) × (6.6) 6.7 - 8.4 (9.1) µm
Q = 1 - 1.36 (1.4) ; N = 40
Me = 8.8 × 7.5 µm ; Qe = 1.2
Y por último una imágen de una espora con las medidas de las espinas:
Para terminar y ya sin microscopía un par de imágenes de un Hypoxylon tropical, todo un clásico, el Hypoxylon lenormandii:
Saludos.
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Hola.
Reabro este tema ya que el día 2 de marzo en la zona de Playa Esmeralda (República Dominicana), me encontré con lo que parece ser de lo mismo, añado unas imágenes:
El pigmento extraíble con KOH al 10% de color verde oliva:
Los estromas a 40 aumentos:
Himenio a 400 aumentos en solución de Lugol:
Ascos en agua a 1000 aumentos:
El aparato apical en solución de Lugol:
Materia interascal en solución de Lugol:
Y por último un par de imágenes de las esporas en agua:
A diferencia del estudio anterior en esta ocasión los ejemplares estaban en plena forma y pude obtener esporas por medio de la esporulación natural, en este estudio sus esporas midieron:
(7.8) 7.9 - 9 (9.3) × (3.4) 3.5 - 4 µm
Q = (2) 2.1 - 2.4 (2.6) ; N = 30
Me = 8.4 × 3.8 µm ; Qe = 2.2
Saludos.
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Hola.
Un siempre complicado Inocybe del 13 de octubre del pasado año, bajo pinos, en un pinar de altura cerca de la estación de esquí de Cerler.
Los datos moleculares apuntan con una coincidencia del 100% a la:
Inocybe sindonia (Fr.) P. Karst
Caulocistidios abundantes en la parte alta del pie:
Caulocistidios ya más dispersos y mas bien escasos en la parte media del pie:
Hifas de la parte baja del pie, sin caulocistidios:
Queilocistidios abundantes en la arista laminar, con unas medidas de (62.9) 72.1 - 82.9 (87.6) × (12.6) 14.4 - 17.4 (18.3) µm., Me = 76.9 × 15.6 µm.
Una imágen con las medidas de la anchura de la pared de los queilocistidios:
Pleurocistidios dispersos por la cara laminar, con unas medidas de 66.5 - 81.08 (81.1) × (12.9) 12.94 - 15 µm., Me = 73.6 × 14.1 µm.
Un pleurocistidio con las medidas de la anchura de la pared:
Los basidios de la cara laminar:
Y por último las esporas:
Estas esporas libres con unas medidas en agua de:
(8.4) 8.9 - 10.4 (11.9) × (5) 5.4 - 6.2 (6.4) µm
Q = (1.5) 1.6 - 1.8 (2) ; N = 40
Me = 9.7 × 5.8 µm ; Qe = 1.7
Añado una imágen con el árbol filogenético:
En el árbol podemos observar un par de secuencias de la Inocybe diversa, inclusive la secuencia del material tipo, con una coincidencia a nivel molecular superior al 99,85% con mi propuesta, aunque la Inocybe diversa no la puedo ni tan siquiera considerar por varias razones, la primera porqué se trata de una especie endémica de Nueva Zelanda, asociada a géneros como Leptospermum o Kunzea y además según bibliografía con esporas nodulosas, nada que ver con la especie aquí descrita.
Saludos.
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Hola.
Una Ramaria del 1 de noviembre del pasado año, brotando directamente sobre excrementos de ganado vacuno.
Con los datos microscópicos de que disponía, no pude llegar a ninguna conclusión medianamente aceptable, por lo que decidí acudir a la secuenciación, el resultado del gen ITS nos da una coincidencia por identidad del 100%, con la secuencia del material tipo de la :
Ramaria paraconcolor Franchi & M. Marchetti
Los basidiomas brotando sobre los excrementos:
Puntas de las ramas a 20 aumentos:
Rizomorfos en solución de Rojo Congo diluído:
Los rizomorfos en agua:
Las hifas subiculares en solución de Rojo Congo diluido, sin aparentemente fíbulas:
Las hifas subiculares en solución de amoníaco:
Los basidios utilizando agua, muy difíciles de observar:
Con amoníaco, la cosa ya salió bastante mejor:
Las esporas en el mismo medio:
Las esporas en azul de Cresilo:
Y por último las esporas en agua:
Estas esporas obtenidas por esporulación natural y en agua con unas medidas de:
(7) 7.5 - 9 (9.8) × (4.8) 4.9 - 5.7 (5.9) µm
Q = (1.3) 1.4 - 1.7 (1.8) ; N = 40
Me = 8.2 × 5.2 µm ; Qe = 1.6
Añado una imágen con el árbol filogenético:
En el árbol vemos mi especie perfectamente alineada con la secuencia del material de la especie tipo.
Saludos.
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Hola.
Reabro este tema ya que al no corresponderse la morfología esporal de mi estudio cono lo que honestamente puedo considerar como Tricholoma (con esporas lisas), pedí consejo a mi buen amigo Enrique Rubio, el que me aconsejó que recuperara el exsiccata, recortara un trozo de lámina y volviera a probar suerte con las esporas libres, para ello utilicé Rojo Congo diluido y si bien pude observar algunas esporas verrucosas, encontré otras tantas ya de paredes lisas, algo más acorde con la morfología que deberían presentar, añado una imágen de estas esporas libres lisas, y en la miniatura unas pocas esporas verrucosas:
Aun así, no comprendo como las obtenidas por esporulación natural, podían presentar esta apariencia verrucosa angry.png.
Saludos.
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Hola.
Una Lepista del pasado 13 de diciembre, que atendiendo a los datos moleculares, nos dan una coincidencia tanto por cobertura como por identidad del 100%, con la:
Lepista irinoides Bohus
Hifas de la suprapellis, filamentosas, hialinas, y con gruesas fíbulas dispersas.
Hifas de la subpellis con idéntica morfología que las de la suprapellis.
Las hifas de la trama en agua:
Arista laminar homomorfsa, sin elementos diferenciados de los basidios o basidiolos:
Los basidios de la cara laminar:
Sección de los basidios con su base:
Unos basidios en agua:
Y una de las pocas esporas observadas con sus medidas:
Para terminar una imágen con el árbol filogenético:
A pesar de la coincidencia del gen ITS del 100% con la Lepista irinoides, vemos en una posición muy cercana a la Collybia irina = Lepista irina, con lo que siendo honestos, para poder corroborar con seguridad la especie, lo más sensato sería el probar con otros genes, algo que no voy a hacer ya que no pienso gastarme más dinero.
Saludos.
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